COVID-19 REDLARA: LIvros (Reproducción Humana e Infertilidad)
Fisiología de la Reproducción Humana
Iván Valencia Llerena., Iván Valencia Madera INTRODUCCIÓN CICLO ENDOMETRIAL TRANSPORTE DE GAMETOS FERTILIZACIÓN CLIVAJE IMPLANTACIÓN REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
El diagnóstico y tratamiento moderno de los problemas de infertilidad de la pareja se basa
en el entendimiento de los eventos fisiológicos que regulan el proceso reproductivo en la
especie humana. Estrategias terapéuticas como la inducción de la ovulación y la
estimulación ovárica controlada, tienen como base el reclutamiento de varios folículos al
inicio de cada ciclo menstrual, por lo que es indispensable conocer las características
morfológicas y los eventos endocrinos que regulan la producción de gametos. El presente
capítulo tiene por objeto resumir de una manera práctica y aplicable en la clínica diaria los
fundamentos de la fisiología de la reproducción(1-4).
Gametogénesis
El proceso reproductivo de la especie humana se basa en la liberación cíclica de un ovocito
maduro a mitad de cada ciclo menstrual, y su unión en la trompa de Falopio con uno de los
espermatozoides depositados en la vagina durante el acto copulatorio. La producción, tanto
del gameto femenino como del masculino, sigue un curso similar en las primeras semanas
de desarrollo embrionario, para posteriormente diferenciarse según la carga cromosómica
adquirida durante la fertilización.
Espermatogénesis
Cada testículo está dividido en aproximadamente 250 lóbulos, cada uno conteniendo 1 a 4
altamente enrollados túbulos seminíferos. Los túbulos seminíferos contienen las células de
Sertoli que envuelven, mantienen y nutren a las células germinales. Los túbulos seminíferos
están cubiertos por el epitelio germinal que produce los espermatozoides. Las células de
Leydig están localizadas en los espacios entre los túbulos seminíferos (células
intersticiales) y producen y secretan testosterona. Es importante estar familiarizado con el
proceso de la espermatogénesis, para poder entender ciertos valores y hallazgos
morfológicos en el análisis del semen. Por ejemplo, cuando se realiza un análisis de semen
se pueden observar células redondas que pueden representar precursores espermáticos.
También se puede notar la presencia de gotas citoplásmicas. Estas gotas citoplásmicas son
citoplasma residual de cuando la espermátide se desarrolló en espermatozoide durante la
espermiogénesis (proceso de maduración final por el cual una espermátide pasa a
espermatozoide).
La espermatogénesis es el proceso mediante el cual las células espermatogénicas sufren
transformaciones y una serie de divisiones celulares para producir espermatozoides
haploides. Este proceso dura aproximadamente 10 semanas. La espermatogénesis ocurre en
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el epitelio germinal de los testículos. La secuencia celular es: espermatogonia,
espermatocito primario, espermatocito secundario, espermátide y finalmente
espermatozoide. La espermatogénesis empieza durante la pubertad y continúa
ininterrumpidamente a lo largo de la vida del hombre. Durante la pubertad se necesita tanto
de hormona folículo estimulante (FSH) como de hormona luteinizante (LH) para el inicio
de la producción de espermatozoides. En los adultos no se requieren niveles normales ni de
FSH ni de LH para mantener la espermatogénesis. El inicio de la espermatogénesis en
hombres con hipogonadismo hipogonadotrópico, adquirido post-puberalmente, se puede
lograr con el reemplazo de LSH solamente. Para mantener una producción normal de
espermatozoides se requiere el reemplazo de ambas gonadotropinas en estos pacientes.
Existen básicamente 2 tipos diferentes de espermatogonias (tipo A y tipo B). Estas células
sufren mitosis para mantener la población con las células tipo B encargadas de la
espermatogénesis.
La espermatogénesis se puede dividir en un fase mitótica y una fase meiótica. Durante la
fase mitótica una proporción de las células germinales, espermatogonias tipo A, entran en
una serie de divisiones mitóticas y tras la quinta división mitótica se diferencian en
espermatogonias tipo B. Las espermatogonias tipo B se dividen mediante mitosis en
espermatocitos primarios.
Los espermatocitos primarios entran en la fase meiótica de la espermatogénesis. La primera
división meiótica produce espermatocitos secundarios que, a diferencia de la ovogénesis la
cual produce una célula grande como el ovocito y una pequeña como el cuerpo polar, las
divisiones meióticas de los espermatocitos producen dos células de tamaño igual. La
segunda división meiótica da lugar a la formación de espermátides redondas con contenido
cromosómico haploide. En la Figura 1 se muestran los estadios de la espermatogénesis.
FIGURA 1. Espematogénesis
Espermiogénesis
La espermiogénesis es el proceso mediante el cual las espermátides redondas se
transforman en elongadas para posteriormente transformarse en espermatozoides. Durante
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la espermiogénesis, el ADN espermático se asocia con proteínas básicas llamadas
protaminas y se vuelve extremadamente condensado. Es durante este proceso que se
forman el acrosoma, cola y pieza intermedia y la mayoría del citoplasma se elimina. Una
vez formado el espermatozoide maduro es liberado en la luz del túbulo seminífero en un
proceso llamado espermiación y transportado dentro de la rete testis, ductos eferentes y
caput epididimario.
Ovogénesis
Las células germinales u ovogonias se originan en el endodermo primitivo del saco vitelino
y hacia la quinta y sexta semana de gestación se puede identificar células germinales en el
saco vitelino y cerca de la alantoides(5). Las células germinales migran a través del
mesenterio hacia las crestas gonadales. Durante esta migración el número de ovogonias
aumenta por mitosis. En la semana 5 se observan en el embrión entre 700 y 1300 de
ovogonias y para la semana 8 se pueden identificar aproximadamente 600.000 ovogonias
en el ovario en desarrollo.
Después de que las células germinales alcanzan las crestas gonadales continúa su
proliferación mediante divisiones mitóticas sucesivas y alcanzan un total máximo de 6 a 7
millones de ovocitos en la semana 20 de gestación, en ambos ovarios. Mediante
mecanismos de apoptosis y de atresia a lo largo del proceso de desarrollo y diferenciación
de las células germinales, su número disminuye y al nacimiento se encuentran solamente
1''000.000 a 2''000,000 de ovocitos, 400.000 al momento de la menarca y muy pocos al
momento de la menopausia. Figura 2.
FIGURA 2. Dotación de células germinales y atresia folicular. Las células germinales
migran al ovario durante el desarrollo embrionario temprano y aumentan su número a
través de divisiones mitóticas sucesivas, pero la mayoría de los ovocitos formados durante
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el desarrollo no sobreviven al momento del nacimiento. Modificado de Kaipia & Hsueh
1997.
El proceso de diferenciación del ovario requiere de la presencia de dos cromosomas X y en
mujeres con carga cromosómica XO el desarrollo folicular es incompleto y la tasa de
atresia es acelerada, por lo que al nacimiento se observan estrías gonadales en lugar de
ovarios normales.
Las células germinales ocupan la periferia o corteza del ovario. Las ovogonias continúan
dividiéndose por mitosis hasta que se convierten en ovocitos primarios a partir de la semana
8 a 12 post-fertilización. Los ovocitos primarios entran en meiosis pero detienen su
división en estadio de diploteno donde permanecerán quiescentes, para hasta reactivarse
después de la pubertad en un ciclo menstrual. La segunda división meiótica ocurre después
de la ovulación y se completa con la fertilización. Figura 3. La meiosis parece estar
controlada por factores autócrinos producidos localmente por el ovario, probablemente
originados en la rete testis. Las células de la granulosa secretan el factor inhibidor de la
meiosis, el cual detiene a los ovocitos en diploteno. Posteriormente, una sustancia
iniciadora de la meiosis la reactivará al momento de la ovulación.
Después de que el ovocito primario entra en estadio de diploteno es envuelto por una capa
de células de granulosa, constituyéndose el folículo primordial. Estas células de la
granulosa están separadas del estroma adyacente mediante una membrana basal. Este
proceso de incorporación de los ovocitos primarios en folículos primordiales continúa a lo
largo del embarazo y termina aproximadamente a los 6 meses de vida extrauterina. Los
ovocitos no incorporados en folículos sufren degeneración y son la mayoría de las células
germinales desaparecidas al momento del nacimiento. Los primeros folículos primordiales
están localizados en la parte interna de la corteza, cerca de la médula. Aproximadamente
alrededor de las 20 semanas de vida fetal los folículos empiezan a crecer bajo la influencia
de las gonadotropinas circulantes, y para el séptimo mes de gestación la maduración
folicular alcanza el estado antral.
Después del nacimiento el peso del ovario aumenta de 250 gramos hasta alcanzar los 400
mg. al momento de la menarca. Durante la infancia y la niñez continúa el crecimiento y la
atresia folicular activamente. La maduración final de los folículos en la pubertad ocurre en
respuesta a los niveles crecientes de FSH y LH.
Durante la edad madura los ovarios humanos pesan entre 10 y 20 gramos en promedio. Los
folículos se encuentran envueltos en tejido conectivo de la corteza ovárica y pueden
dividirse en dos tipos funcionales: folículos primordiales en reposo y folículos en
crecimiento. La mayoría de los folículos (90 a 95%) están en fase de reposo durante la vida
reproductiva. El reclutamiento de un folículo primordial inicia un dramático cambio en el
crecimiento, estructura y función del folículo. Los folículos en crecimiento se dividen en 5
categorías básicamente: primarios, secundarios, terciarios, preovulatorios y atrésicos. Los
primeros tres estadios ocurren sin la influencia de las gonadotropinas y están controlados
por mecanismos intraováricos.
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FIGURA 3. Estructura y clasificación de los folículos ováricos durante el crecimiento y
desarrollo. Adaptado de Erickson.
Folículo primordial
Los folículos primordiales se componen de una sola capa de células fusiformes de la
granulosa y un ovocito maduro detenido en estadio de diploteno. El ovocito mide
aproximadamente 30 um. Las células de la granulosa proyectan procesos protoplásmicos
que alcanzan la lamina basal aportando así una ruta de transporte de nutrientes. El folículo
no tiene un contacto directo con la circulación sanguínea y se encuentra aislado en un
microambiente aislado de otras células por la lámina basal. Figura 4.
FIGURA 4. Folículo primordial
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Folículo primario
El primer signo del crecimiento folicular es la diferenciación de las células de la granulosa
que adoptan una configuración cuboidal dentro de la lámina basal, para luego sufrir
divisiones mitóticas y formar un estrato multicapa de células de la granulosa. La células de
la granulosa en estrecha proximidad con el ovocito se denominan corona radiata. El ovocito
crece y produce una sustancia mucoide llamada zona pelúcida que lo rodea y lo separa de
las células de la granulosa. Figura 5. La zona pelúcida contiene receptores de
espermatozoides especie específicos, previene la polispermia y promueve el movimiento
del ovocito fertilizado dentro de la trompa uterina hacia la cavidad uterina.
FIGURA 5. Folículo primario. Una vez iniciado el crecimiento las células de la
granulosa se vuelve cuboideas. El ovocito secreta la zona pelúcida.
Folículo secundario
El folículo secundario se forma por la proliferación de las células de la granulosa y por la
fase de crecimiento final del ovocito que alcanza las 120 um de diámetro. El diámetro del
folículo aumenta progresivamente hasta los 180 um y contiene aproximadamente 5.000
células de la granulosa. La células estromales por fuera de la lámina basal se diferencian y
se disponen concéntricamente alrededor del folículo para forma la teca interna y externa. Es
en este estadio que el folículo adquiere un aporte sanguíneo independiente conformado por
una arteria que termina en un plexo capilar en la lámina basal. Figura 6. Los capilares no
penetran la membrana basal, de tal manera que la granulosa y el ovocito permanecen
avasculares. En este momento aparecen los cuerpos de Call-Exner.
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FIGURA 6. Folículo secundario. El folículo secundario posee varias capas de
células de la granulosa y se forma la teca interna y externa.
Folículo terciario
El folículo terciario se caracteriza por la hipertrofia de la teca y la aparición de un espacio
líquido entre las células de la granulosa llamado antro. El antro contiene un trasudado
plasmático y productos de secreción de la granulosa. Las células granulosas y tecales
desarrollan uniones especializadas llamadas uniones estrechas o “gap junctions”. Estas
uniones estrechas permiten la comunicación entre las células y la sincronización de la
función folicular. Figura 7.
FIGURA 7. Folículo antral
Folículo preovulatorio o de de Graff
El folículo terciario aumenta rápidamente de tamaño bajo la influencia de las
gonadotropinas para formar el folículo preovulatorio. Durante este estadio las células de la
granulosa y el ovocito permanecen encapsulados por la lámina basal y no tienen una
vascularización directa. El líquido del antro aumenta de volumen y el ovocito, rodeado por
una acumulación de las células de la granulosa (el cúmulus oophorus) ocupa un posición
excéntrica dentro del folículo. La diferenciación y actividad de las células de la granulosa
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varía según se encuentre mayor cantidad de receptores de LH en las células cercanas a la
membrana basal y menor cantidad en las adyacentes al ovocito. Figura 8. El folículo
preovulatorio madura libera el ovocito al momento de la ovulación. La progresión de la
meiosis en el ovocito maduro se asocia con la pérdida de la membrana nuclear con
desintegración de la vesícula germinal, condensación de la cromatina en cromosomas
bivalentes, separación de los cromosomas homólogos y detención en metasfase II. La
meiosis se completa con la liberación del segundo cuerpo polar al momento de la
fertilización.
FIGURA 8. Folículo preovulatorio. La secreción activa de las células de la granulosa
expande el antro. Se distingue el cumulus oophorus. El ovocito está en
metafase II.
Estroma ovárico
El estroma ovárico consiste de tres tipos principales de células: células de tejido conectivo
similar a la de otras localizaciones, células contráctiles y varios tipos de células
intersticiales. Las células intersticiales secretan andrógenos y sufren modificaciones
morfológicas bajo la influencia de la LH y la hormona gonadotropina coriónica (hCG). Se
originan del mesénquima embrionario. El ovario contiene 4 categorías de células
intersticiales: primarias, secundarias, tecales e hiliares.
Las células intersticiales primarias son las primeras en aparecer y se semejan a las células
de Leydig del testículo fetal, siendo capaces de secretar esteroides. Las células secundarias
se derivan de la teca de los folículos atrésicos. Estas células se hipertrofian y mantienen su
capacidad de secreción de esteroides, ya que permanecen sensibles a la acción de la LH y
adquieren inervación catecolaminérgica. Las células intersticiales tecales en los folículos
terciarios son el sitio de secreción activa de andrógenos. Se desarrollan del mesénquima
que se diferenció cuando se formaron los folículos secundarios. Contienen receptores de
LH y las enzimas 3-B hidroxiesteroide deshidrogenasa y Delta4,5-isomerasa. Al degenerar
el folículo estas células dan origen a las células intersticiales secundarias. El hilio ovárico
contiene las células hiliares. Estas células contienen cristales de Reinke y son
indistinguibles de las células de Leydig testiculares y secretan testosterona en repuesta al
estímulo de la LH.
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Dinámica del crecimiento folicular
En el humano la cantidad de folículos primordiales disponibles, o reserva ovárica,
disminuye conforme avanza la vida de la mujer. Como ya se mencionó, la mayoría de los
folículos sufrirán el fenómeno de atresia pero a estadios variables de desarrollo. El
crecimiento y atresia de los folículos es un fenómeno continuo que no se detiene ni siquiera
en momento de anovulación fisiológica como el embarazo y la lactancia, ni en estados de
anovulación crónica como el ocasionado por el uso de anticonceptivos. Sin embargo, el
crecimiento folicular en estas condiciones es limitado y no avanza mas allá del estadio de
folículo preantral o antral temprano. La interegulación de estos dos fenómenos fisiológicos
–crecimiento y atresia- está gobernado por mecanismos complejos que fueron estudiados
inicialmente por Gougeon(4).
El reclutamiento de varios cientos o miles de folículos primordiales para salir del estado en
reposo en que se encuentra, se denomina reclutamiento inicial(8). Los folículos primordiales
en reposo son reclutados de manera constante para entrar en el pool de folículos en
crecimiento. Una vez iniciado el crecimiento y llegar al estadio de folículo antral sólo les
queda el camino de la atresia, a menos que sean rescatados por el aumento intercíclico de
FSH. Durante el reclutamiento inicial, factores intraováricos y otros desconocidos
estimulan a los folículos primordiales para que entren en actividad después de haber estado
quiescentes por meses e incluso por décadas. Alternativamente, el reclutamiento inicial
puede deberse a la liberación de estímulos inhibitorios que mantienen a los folículos en
estado de reposo. El fenómeno de apoptosis elimina continuamente folículos a lo largo del
desarrollo a la vez que se van agregando nuevos folículos al pool de folículos en desarrollo.
Por el contrario, el reclutamiento cíclico se refiere al rescate de un grupo de folículos
antrales de entre 2 a 5 mm de diámetro y ocurre debido al aumento de la concentración de
FSH durante cada ciclo reproductivo después de la pubertad. Los ovocitos de estos
folículos han completado su crecimiento, poseen zona pelúcida y son competentes para
resumir la meiosis.
No se conoce cuando ni cuáles factores son los responsables del inicio de la diferenciación
de los folículos primordiales. En los humanos el crecimiento folicular activo empieza
cuando el núcleo del ovocito alcanza un tamaño crítico de 19 um y cuando
aproximadamente posee 15 células de la granulosa en un corte transversal mayor. Una vez
que ha iniciado el crecimiento del folículo primordial, probablemente se requieren
aproximadamente 300 días para que complete su desarrollo a folículo primario(4).
Se ha implicado a las gonadotropinas, especialmente a la FSH, como el factor que inicia el
crecimiento de los folículos primordiales ya que se ha visto que tanto en la infancia como
en la edad avanzada es mayor la proporción del reclutamiento inicial; sin embargo, los
datos son contradictorios ya que en mujeres hipogonadotrópicas, fetos anencefálicos y en
ratas mutantes deficientes de FSH continua el crecimiento inicial, aunque en menor
proporción.
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Recientemente se ha implicado al ovocito en el inicio del crecimiento folicular debido a la
identificación en ovocitos humanos del factor de crecimiento y diferencias 9 (GDF-9). Sin
embargo, sólo ha podido identificarse en folículos primarios en adelante por lo que su papel
el reclutamiento inicial está aún por determinarse(9).
El folículo primario tarda aproximadamente 120 días en completar su desarrollo y
convertirse en folículo secundario. Factores de crecimiento como el GDF-9 o el kit de
unión están implicados en el crecimiento del ovocito.
El folículo secundario (estadio I) necesita aproximadamente entre 65 y 75 días para pasar
por los estadios antral temprano y antral tardío para alcanzar el estadio 5, cuando con un
diámetro de 2 a 5 mm entra en el pool de folículos antrales reclutables. Folículos sanos de
diámetro entre 2 a 5 mm (clase 5) se observan todo momento durante el ciclo menstrual.
Aquellos que están presentes durante la fase lútea tardía constituyen la población a partir de
la cual emergerá el folículo destinado a ovular en el siguiente ciclo menstrual. El número de
folículos clase 5 durante la fase lútea tardía es aproximadamente de 3 a 11 por ovario en
mujeres menores de 33 años y disminuye marcadamente con la edad. El reclutamiento
cíclico y la selección son un proceso continuo mediante el cual, a través de selección
negativa, el folículo más sensible al efecto de la FSH bloquea el crecimiento del resto de la
cohorte y ocurre durante la fase intercíclico mediante la elevación de FSH que termina con
la dominancia de un folículo.
El crecimiento folicular posterior requiere de la estimulación de las gonadotropinas,
especialmente de la FSH. Figura 9. Se distinguen 3 pasos sucesivos:
1. Reclutamiento cíclico, que corresponde a la entrada del crecimiento terminal de un
grupo de folículos (estadios 5 a 8).
2. Selección folicular, que resulta en la emergencia del fututo folículo ovulatorio.
3. Dominancia folicular, ejercida por el folículo seleccionado y que conducirá a la
atresia a los otros folículos.
La selección folicular involucra al folículo con mayor índice mitótico de las células de la
granulosa y, generalmente, al de mayor diámetro. El folículo continúa su crecimiento
mientras que la FSH disminuye y aparecen signos de atresia en los otros folículos. En caso
de administración exógena de FSH estos folículos destinados a la atresia pueden ser
recuperados.
La dominancia del folículo seleccionado es claramente evidente en la fase folicular tardía.
El crecimiento continua hacia los estadios 7 y 8, mientras que los niveles de FSH continúan
disminuyendo. Este crecimiento preferencial de debe al mayor aporte vascular del folículo
dominante así como al aumento de la respuesta a la FSH, producida por mecanismos
autócrinos basados en la producción de factores de crecimiento como el IGF-1 por parte las
células de la granulosa. La evolución de estos estadios de desarrollo folicular hacia la
ovulación o la atresia está dirigida por la capacidad de aromatización de las células de la
granulosa. El folículo dominante posee una alta actividad de aromatización de andrógenos.
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El folículo dominante madura y secreta cantidades crecientes de estrógenos. Los niveles de
estrógenos alcanzan un pico hacia el final de la fase folicular y si este pico es de amplitud y
duración adecuada, desencadena la liberación de LH mediante un sistema de
retroalimentación positiva.
En resumen, el desarrollo folicular temprano tiene lugar a lo largo de varios ciclos
menstruales y se requieren aproximadamente 85 días para que un folículo preantral alcance
el estadio preovulatorio. La entrada de los folículos en la cohorte de folículos en crecimiento
tiene lugar de manera continua y se produce por oleadas, lo que significa que en todo
momento de la vida de la mujer, independientemente de si esté embarazada o no, use o no
anticonceptivos(10-12), hay folículos preantrales listos para responder a la señal endócrina
correcta y continuar su desarrollo final.
FIGURA 9. Etapas del crecimiento folicular
Período preovulatorio y ovulación
Al final de la fase de crecimiento el folículo maduro reacciona a la liberación de
gonadotropinas para completar la maduración citoplásmica y nuclear del ovocito. Las
células del cúmulus secretan una gran cantidad de ácido hialurónico que se acumula en los
espacios intercelulares y provoca la disociación de las células del cúmulus seguido de su
ruptura y así el ovocito, rodeado de una porción de las células de la granulosa y de la
corona radiata, es liberado con el líquido folicular. La formación del estigma preovulatorio
en el ápice del folículo sufre un proceso de isquemia y de proteólisis enzimática que
debilita la pared del folículo y permite la expulsión suave del contenido folicular. La
producción de activador del plasminógeno activa la producción de colagenasa que disocia
las fibras de la teca, al mismo tiempo que la producción de prostaglandinas induce una serie
de contracciones rítmicas de los mioblastos de las paredes foliculares y del estroma cortical
que produce, en último término, la expulsión del contenido folicular.
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El ovocito completa su maduración citoplásmica y nuclear bajo el influjo de la LH. Los
gránulos corticales del ovocito migran hacia la periferia y se adhieren hacia la membrana
plasmática. La meiosis se reactiva, se expulsa el primer cuerpo polar y los cromosomas se
alinean en metafase II en espera del complemento cromosómico espermático, en caso de
fertilización futura.
El cuerpo lúteo
Después de la expulsión del ovocito el folículo se transforma en cuerpo lúteo, que es el
responsable de la producción hormonal que transformará el endometrio, previamente
proliferado por los estrógenos, para hacerlo receptivo del embrión. La lámina basal
desaparece completamente y la angiogénesis invade toda la pared del cuerpo lúteo. Los
vasos sanguíneos invaden completamente las células de la granulosa y se abren en la
cavidad folicular llenándola rápidamente con un coágulo central que modificará su aspecto
durante la fase lútea. Las células de la granulosa adquieren inclusiones lipídicas
citoplásmicas necesarias para la producción de esteroides sexuales y se transforman en
células luteales grandes responsables de la producción de esteroides, especialmente de
progesterona. Las células de la teca interna constituyen las células luteínicas pequeñas que
se sitúan en la periferia del cuerpo lúteo y que se entrelazan desde esta posición con las
células luteínicas grandes.
Cambios morfológicos cíclicos en el endometrio, gobernados por el ambiente hormonal
predominante en cada fase del ciclo menstrual, lo preparan para el proceso de implantación
embrionaria en caso de producirse la fertilización o lo preparan para la menstruación, en
caso de que no se produzca la fertilización del ovocito durante ese ciclo ovárico. La capa
funcional del endometrio sufre cambios a lo largo del ciclo menstrual y se elimina durante la
menstruación conservándose la capa basal, a partir de la cual se regenerará una nueva capa
funcional cada mes. El ciclo uterino endometrial puede dividirse en tres fases: fase
proliferativa, fase secretora y fase menstrual.
La fase proliferativa empieza con el final de la menstruación. Para el día 5 a 6 del ciclo la
cavidad uterina está completamente reepitelizada y empieza el crecimiento del estroma
endometrial. Tan pronto queda expuesta la capa basal por el desprendimiento de las capas
suprayacentes empieza la proliferación epitelial, sustentado por la proliferación de
fibroblastos que le ofrecen una superficie en la cual las células epiteliales pueden deslizarse
para cubrir toda la superficie. Esta reparación endometrial se produce a pesar del nivel
estrogénico bajo propio de los primeros días del ciclo ovárico, y se produce en respuesta al
daño tisular más que a la estimulación estrogénica. A pesar de esto, la capa basal es rica en
receptores de estrógenos. Los cambios más pronunciados ocurren a nivel de las glándulas
endometriales cuyo epitelio responde a los niveles estrogénicos en aumento producidos por
el folículo en crecimiento. Al comienzo las glándulas son estrechas, tubulares y tapizadas
por una capa de células columnares. Las glándulas endometriales presentan mitosis activas
y al final de la fase proliferativa se observa pseudoestratificación de los núcleos de las
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células glandulares. El estroma endometrial denso y compacto al inicio de la fase
proliferativa, empieza a sufrir edematización para convertirse en un sincicio al final de esta
fase. Las arterias espirales son rectas y sin ramificaciones al comienzo de la fase
proliferativa y avanzan progresivamente hasta alcanzar la membrana basal del epitelio de
superficie, donde forman una red capilar. Figura 10. El endometrio crece de 0.5 mm, al
final de la menstruación, hasta alcanzar 3.5 a 5 mm de altura gracias a que el estroma
endometrial se ha vuelto a edematizar.
La ovulación marca el fin de la fase proliferativa y da inicio a la fase lútea. Los cambios
que ocurren después de la menstruación siguen un curso predeterminado, lo que permite el
fechado endometrial con bastante precisión cuyos pioneros fueron Noyes, Hertig y Rock(13).
El crecimiento endometrial se detiene en una altura fija (5 mm aproximadamente) a pesar
de los niveles constantes de estrógenos. Esta inhibición del crecimiento es debido a la
acción de la progesterona sobre la acción estrogénica. La progesterona induce la
producción de 17- B hidroxiesteroide deshidrogenasa y sulfotransferasas que transforman el
estradiol en el estrógeno menos activo, estrona, el cual es eliminado de la célula.
El primer signo de la ovulación es la aparición de vacuolas de glicógeno subnuclear en el
epitelio glandular alrededor del día 17 ó 18. Progresivamente las vacuolas migran hacia la
membrana apical para verter su contenido en la luz de la glándula. Las arterias espirales
continúan su crecimiento y al estar la altura del endometrio fija sufren enrollamiento. Así
mismo, las glándulas endometriales se vuelven tortuosas.
FIGURA 10. Endometrio de fase secretora
Para el día 13 postovulatorio, la capa funcional del endometrio se ha diferenciado en el
estrato esponjoso compuesto por estroma edematoso con arterias espirales enrolladas y
glándulas endometriales exhaustas, y sobre éste el estrato compacto, donde las células
estromales se han convertido en grandes y poliédricas. Los cuellos glandulares atraviesan
este segmento, son comprimidos y menos prominentes. Los capilares subepiteliales se
encuentran congestionados.
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Al momento de la implantación, alrededor del día 21 a 22 del ciclo, los cambios más
importantes son a nivel del estroma endometrial mediado por la producción de
prostaglandinas inducida por estrógenos y progesterona. El aumento de prostaglandinas
aumenta la permeabilidad vascular. No se observan mitosis después del día 22. Las células
estromales una vez transformadas en células deciduales debido al rescate del cuerpo lúteo
por la gonadotropina coriónica embrionaria, producen factores de crecimiento como IGF-1,
proteinas fijadoras de IGF, renina y relaxina, entre otras. La predecidualización empieza
alrededor de los vasos sanguíneos a partir de células estromales originadas del mesénquima
uterino primitivo. Las células deciduales controlan la invasión del trofoblasto y sus
productos intervienen en los eventos autocrinos y paracinos del embarazo.
En ausencia de fertilización, para el día 23 del ciclo menstrual el cuerpo lúteo empieza a
degenerar y los niveles hormonales a disminuir. La caída de estrógenos y progesterona
inicia los eventos que conducen a la menstruación: reacción vasomotora, apoptosis, pérdida
de tejido y menstruación. El fenómeno más importante es la disminución de la altura del
estroma y la marcada respuesta vasomotora de las arterias espirales. Con la disminución del
diámetro endometrial se detiene el flujo sanguíneo dentro de las arteriolas. Para el día 25 a
26 del ciclo la endotelina y la tromboxina producen la vasoconstricción de las arterias
espirales. El flujo venoso se detiene y se produce vasodilatación. Cada ciclo de
vasoconstricción y espasmos se vuelven cada vez más profundos y prolongados hasta
producir isquemia endometrial. El endometrio es invadido por leucocitos y se produce
diapédesis hacia el espacio intersticial. La progesterona inhibe la lisis de las membranas
celulares de los lisosomas, los cuales ahora liberan lisosimas que digieren los componentes
celulares produciendo mayor liberación de prostaglandinas, extravasación de glóbulos
rojos, necrosis y trombosis vascular. Las metaloproteínas de la matriz extracelular degradan
a los componentes de la matriz extracelular y de la membrana basal. Existe un plano de
separación natural entre la capa basal y el estrato esponjoso y cuando la desorganización
tisular alcanza este nivel, el estroma edematoso del estrato esponjoso se descama, colapsa y
aparece la menstruación. Figura 11.
FIGURA 11. Endometrio de fase menstrual 15
Transporte del gameto femenino y del pre-embrión
El ovocito maduro, junto con sus células del cúmulus oophorus, liberado durante la
ovulación está embebido en una sustancia gelatinosa que lo adhiere a la superficie del
ovario, sobre el estigma folicular, a la espera de ser captado por la trompa de Falopio. Las
lengüetas fimbriales de la trompa de Falopio, con movimientos de vaivén, se aproximan
sobre la superficie ovárica para capturar al óvulo. Dos a tres minutos después de la
ovulación el complejo ovocito-cúmulus entra en la trompa, sin embargo, hay evidencia de
que puede ser un poco mas lenta (15 minutos)(14). Ciertamente existen variaciones en este
proceso ya que mujeres con una sola trompa y un solo ovario contralateral consiguen
embarazo, lo mismo que cuando se depositan espermatozoides y óvulos en el peritoneo
mediante punción transvaginal(15). Mientras la fimbria barre la superficie ovárica, las células
granulosas del complejo cúmulus ooforus se exponen a la corriente líquida creada por el
latido rápido de los cilios de la superficie de la fimbria. Esta corriente lleva a las células de
la granulosa hacia el ostium abdominal y se quedan en la región ampular de la trompa
mientras que el óvulo, dentro del cúmulos oophorus, es llevado hacia el infundíbulo
tubárico. Este proceso puede tomar minutos a horas. Una vez en la ampolla se produce la
fertilización. Las corrientes de líquido inducidas por los cilios son el principal medio de
transporte para conducir al cúmulus hacia la unión ampuloistmica. El tiempo es de minutos
desde la fimbria, y horas desde la ovulación. El cúmulus se detiene en la unión
ampuloistimica debido a la masa de células granulosas, al diámetro disminuido de la luz del
istmo (1 mm) y al reducido número de cilios dentro del mismo. Se considera que la
fertilización ocurre mas frecuentemente en la ampolla y particularmente en la unión
ampuloistmica. El rápido transporte ciliar desde la fimbria conduce al cúmulus oophorus al
medio ambiente nutritivo de la región proximal de la ampolla.
Una vez eyaculados los espermatozoides en la vagina y pasado a través del moco cervical,
se movilizan a través de la cavidad uterina, trompa intramural e istmo, mediante una
combinación de movimientos de propulsión propia, contracciones miometriales y
miosalpingueales retrógradas y por la corriente de líquido tubario. Después de la
capacitación los espermatozoides se hiperactivan y penetran la zona pelúcida, se produce la
reacción acrosomal y posteriormente la fertilización. Después de 24 horas en la ampolla
proximal el cúmulus ooforus se disipa para facilitar la entrada del cigoto dentro del istmo.
El embrión permanece en el istmo por dos días. Mediante movimientos de vaivén,
gradualmente la mórula desciende a la cavidad uterina donde eclosiona el blastocitos 4 días
después de la ovulación. Pasan 3 días hasta que finalmente se implanta. La fertilidad en la
mujer se afecta poco cuando hay pérdida sustancial de la longitud ístmica (comparado con
el ámpula), lo que sugiere que el miosalpinx ístmico poco papel tiene en la entrada del
embrión a la cavidad uterina, ya que sólo se necesita una pequeña porción de istmo para
realizar esta función en la especie humana.
16
Transporte de los gametos masculinos
La vagina generalmente se considera un medio hostil del cual los espermatozoides deben
migrar rápidamente para poder sobrevivir. El pH vaginal normal es de 3.5 a 4.0, en
contraste del pH óptimo para la supervivencia espermática que es de 7.0 a 8.5 y se conoce
que la motilidad se afecta marcadamente en un pH menor a 6.0. Varios factores entran en
juego durante la inseminación para neutralizar la acidez vaginal que incluyen los fluidos
lubricantes de la vagina producidos durante la estimulación sexual que elevan el pH a 4.2
4.5; además, el líquido seminal es por sí mismo alcalino, pH 7.5. Se ha reportado un
incremento del pH vaginal a 7.0 dentro de los primeros 8 segundos de la eyaculación,
confirmando estudios de Master y Johnson que midieron seriadamente el pH vaginal
después del coito y demostraron que el pH vaginal permanece por arriba de 6.0 hasta por 2
horas(16). En consecuencia de estas observaciones los espermatozoides rápidamente pierden
su motilidad en la vagina.
En los seres humanos se puede encontrar espermatozoides dentro del moco cervical dentro
de 1.5 a 3 minutos después de la eyaculación. A diferencia vaginal, el pH del moco cervical
normal permanece alcalino a lo largo del ciclo menstrual, con un pico de 8.4 en el día del
pico de LH, coincidiendo con el pico de la penetrabilidad espermática.
El endocérvix está cubierto por un epitelio columnar alto compuesto por dos tipos celulares
primarios: células secretoras no ciliadas y células ciliadas. Las células secretoras contienen
glicoproteínas y están cubiertas por microvilli. Las células ciliadas tienen cinocilios que
muestran in vitro un latido hacia la vagina. Se ha propuesto que la corriente del latido ciliar
provaginal sirve para orientar el moco cervical dentro de canales de baja viscosidad o
cuerdas que lo guían desde una unidad secretora de moco hacia el canal cervical y el
orificio cervical externo, asegurando la depuración y reabastecimiento del moco y
probablemente proveen una vía de baja resistencia que facilita la migración y almacenaje
espermáticos.
El moco cervical es producido por las células no ciliares por un mecanismo de secreción
merocrina en el cual la célula permanece intacta. No está bien definido si el moco cervical
se secreta con sus fases gel e hídrica completamente desarrolladas e hidratadas, o
primariamente como molécula de mucina que forma una malla que adquiere su fase acuosa
como un transudado sérico. La producción del moco cervical está bajo control hormonal. El
moco estrogénico es abundante, acuoso, delgado en consistencia, claro, acelular y apoya la
penetración y sobrevida espermáticas. El moco cervical progestagénico es escaso, grueso,
opaco, celular e inhibe la penetración espermática. El pico en la cantidad y “spinnbarkeit”
del moco cervical ocurre 1 día antes del pico de LH y el nadir de la viscosidad, celularidad
y formación de helechos del moco cervical y la penetración espermática ocurre en el día del
pico de LH. Se producen cerca de 60 mg/día de moco cervical en la fase folicular temprana
y casi 700 mg/día a medio ciclo.
El moco cervical es un hidrogel, o sea un fluido heterogéneo de dos fases con componentes
de alta y baja viscosidad. La fase gel de alta viscosidad, insoluble, está compuesta por una
malla de mucina. Las macromoléculas filamentosas de mucina forman una malla de
micelas interconectadas, ya sea unidas por puentes disulfuro o enrollada al azar, formando
17
una malla tridimensional cuyas espacios intermicelares contienen la fase acuosa. El tamaño
de la fase acuosa depende del grado de hidratación o puentes, o ambos, entre las micelas
que, en cambio, están influenciadas hormonalmente. En la fase periovulatoria, cuando el
moco es delgado y acouso, los espacios intermicelares son amplios como para permitir la
penetración espermática. Bajo influencia progestacional disminuye la hidratación y los
espacios intermicelares disminuyen de tamaño, restringiendo de este modo la penetración
espermática.
El contenido acuoso varía entre 85 y 92% en la fase lútea y 95 a 98% a la mitad del ciclo.
La fase acuosa consiste de electrolitos disueltos (cloruro de sodio, potasio, calcio,
magnesio, zinc, cobre y hierro). Permanece isotónico a lo largo del ciclo menstrual.
También contiene elementos de bajo peso molecular como glucosa, maltosa, manosa,
lípidos (fosfolípidos, colesterol, ésteres de colesterol, monoglicéridos, diglicéridos,
triglicéridos y ácidos grasos libres), AMP cíclico, glicógeno y aminoácidos libres. También
contiene proteínas séricas y no séricas así como enzimas e inhibidores de enzimas. Muchas
de las proteínas solubles, incluyendo inmunoglobulinas, muestra un nadir en la porción
periovulatoria del ciclo.
El contenido total y la proporción de ácido siálico en el moco cervical es de una gran
importancia durante el período periovulatorio y se puede aumentar con el uso de
estrógenos.
Transporte espermático rápido
Considerando el pH óptimo para la sobrevida espermática, la diferencia de pH entre la
vagina (3.5 a 4.0) y el moco cervical a la mitad del ciclo (8.0) así como el efecto
evanescente del efecto buffer del fluido seminal, no es sorprendente que poco
espermatozoides sobrevivan en la vagina más de 30 minutos.
La rápida entrada de los espermatozoides en el moco cervical es necesaria para asegurar la
sobrevida de una subpoblación mótil. Mas inesperado es la rapidez con que los
espermatozoides habitan el tracto reproductor superior. El mecanismo y la posible
explicación biológica del transporte rápido de espermas tiene implicaciones en la
evaluación clínica de la infertilidad cervical y la interacción moco-semen. Se ha reportado
espermatozoides en la trompa de Falopio 5 minutos después de la inseminación; así mismo,
el número total de espermatozoides en la trompa es directamente proporcional al número
inseminado y la población de espermatozoides tubarios se estabiliza en 15 minutos. En
estado estable, 1 de cada 2000 espermatozoides inseminados permanece en el moco
cervical y 1 de cada 14 millones se encuentra en el oviducto.
El mecanismo del transporte rápido de espermatozoides probablemente sea un fenómeno
pasivo. La teoría que mejor explica el transporte pasivo piensa que son responsables las
contracciones coordinadas de la vagina, útero y trompas de Falopio, especialmente durante
el orgasmo. Las prostaglandinas seminales y la endotelina-1 también tienen un papel
importante. Sin embargo, el significado de este transporte rápido no esta muy claro. Hay
evidencia de que los primeros espermatozoides en entrar en el tracto reproductor superior
no son funcionales; además, se requiere de su capacitación para modificar la membrana
18
cefálica del espermatozoide para que sea capaz de sufrir la reacción acrosomal. El proceso
de capacitación requiere tiempo.
Transporte retardado y reservorio espermático
El moco cervical a la mitad de ciclo es alcalino y los espermatozoides que tienen acceso al
canal endocervical permanecen viables por muchas horas, y probablemente hasta por 7
días. El espermatozoide fertilizante alcanza la trompa más tarde, generalmente después de
que se ha realizado la capacitación. Dado que los espermatozoides vaginales son
rápidamente no viables, los espermatozoides mótiles tienen que originarse de otro lugar. En
la coneja, los mecanismos de retención y liberación espermática incluyen adhesión
espermática a la superficie epitelial y supresión reversible de la motilidad.
En el humano, probablemente el cérvix con sus glándulas endocervicales sea el reservorio
espermático. En los rumiantes, los espermatozoides están distribuidos disparejamente
concentrándose cerca de la mucosa y también hay evidencia de motilidad espermática
disminuida en estos sitios y de adherencia a las superficies mucosas. No se ha establecido el
hecho de que los espermatozoides en las criptas o adheridos a la mucosa cervical, sean
capaces de alejarse y migrar a la trompas de Falopio. Puede ser que los espermatozoides en
el moco cervical permanezcan ahí y representen una población excluida, atrapada en el
tracto genital inferior.
Está claro que los espermatozoides humanos en el moco cervical retienen su capacidad
funcional por lo menos por varios días. Clínicamente hay una correlación entre fertilidad y
número de espermatozoides en el moco cervical 48 horas después de una inseminación
intrauterina con semen donado. Espermatozoides recuperados del moco cervical 80 horas
después de inseminación artificial son capaces de penetrar la zona pelúcida humana y
espermatozoides recuperados 120 horas después son móviles y tienen velocidades de
traslación comparables con esperma fresco capacitado. Casi el 100% de los
espermatozoides viables recuperados del moco cervical, 3 días después de la inseminación
intrauterina, tienen acrosoma intacto y estos espermatozoides son capaces de sufrir la
reacción acrosomal en respuesta a un estímulo biológico.
Capacitación
Para poder penetrar las varias capas del ovocito el espermatozoide contiene varias enzimas,
entre las cuales están la hialurodinasa, la enzima penetradora de la corona y la acrosina,
dentro del acrosoma. La reacción acrosomal es un proceso que involucra la fusión
localizada de secciones de la membrana de doble capa del acrosoma, lisis de estas
secciones fusionadas, vesiculación, dispersión y liberación del contenido acrosomal. El
requisito para la reacción acrosomal es la capacitación. La capacitación comprende
modificaciones de la membrana de la cabeza espermática para volverla capaz de sufrir la
reacción acrosomal. Es importante que esta reacción ocurra en la inmediata vecindad del
oocito y para este fin se ha demostrado que el líquido seminal contiene un factor de
descapacitación de alto peso molecular, que altera la membrana cefálica para prevenir que
19
ocurra la reacción acrosomal prematuramente. La capacitación se puede completar in vitro
en 5 a 7 horas.
En vivo la capacitación del espermatozoide ocurre durante su permanencia en el tracto
reproductor femenino y el moco cervical parece estar involucrado. El proceso de
capacitación se puede mantener por largo tiempo. Sin embargo, el mecanismo de la
capacitación es poco conocido. El proceso de capacitación es reversible mientras que la
reacción acrosomal es irreversible. Figura 12. No se producen cambios morfológicos
durante la capacitación. Cambios fisiológicos están claramente asociados con el estado de
capacitación como se refleja por la motilidad hiperactiva. Enzimas del líquido seminal y
moco cervical pueden estar involucradas. Se piensa que la enzima penetradora de la corona
es una proteasa y en el plasma seminal hay actividad inhibidora de proteasas. La remoción
o modificación de estos inhibidores por enzimas contrarreguladoras en el moco cervical, o
por tracción biomecánica mientras los espermatozoides son empujados a través de la malla
de filamentos de mucina, puede intervenir en la capacitación. La capacitación no es
indispensable para lograr embarazos in vitro, ya que mediante la inyección
intracitoplásmica de espermatozoides (ICSI) se logran embarazos utilizando
espermatozoides recuperados de testículo e inyectados directamente al óvulo, sin el paso
previo de la capacitación en el tracto reproductivo. La capacitación se acompaña de
hiperactivación de la motilidad espermática, ya que varía el patrón de latido flagelar de baja
amplitud que favorece la motilidad progresiva, a uno de alta amplitud con poca progresión.
Incluye además una disminución de la relación colesterol/fosfolípidos de la membrana
espermática, pérdida de componentes que recubren la superficie espermática (factor
inhibitorio del plasma seminal) y adquisición de la actividad de unión a la zona pelúcida.
FIGURA 12. Reacción acrosómica. A) Acrosoma intacto, B) Reacción acrosómica en
curso, C) Reacción acrosómica completa. Ac acrosoma, ES segmento ecuatorial, F sitio de
fusión con la membrana ovocitaria.
Selección espermática
El moco cervical periovulatorio restringe selectivamente la migración de espermatozoides
morfológicamente anormales, encontrándose mayor proporción de formas normales en el
cuello uterino y en el líquido uterino que en el semen. El mecanismo de la selección
20
espermática no está del todo claro, pero probablemente resulta tanto de propiedades
intrínsecas del esperma como de la interacción moco-esperma. Los espermatozoides
morfológicamente anormales son menos móviles y se desplazan con menor velocidad que
los normales. La migración espermática a través de un medio de cultivo también selecciona
una población morfológicamente enriquecida, efecto explicado por las diferencias
intrínsecas en la motilidad espermática, pero la proporción de formas normales es mayor
después de que el mismo eyaculado migra a través de una columna de moco. Los
espermatozoides morfológicamente normales nadan más rápido, pero la frecuencia y
amplitud del latido flagelar son diferentes entre espermatozoides normales y anormales. Lo
anterior sugiere que los espermatozoides morfológicamente anormales encuentran una
mayor resistencia en el moco cervical y que esta diferencia, en vez de un vigor espermático
disminuido, es responsable de la exclusión de estas células anormales.
Sólo muy pocos espermatozoides alcanzan el ámpula tubárica y entran en contacto con el
ovocito. La unión del espermatozoide con el óvulo se basa en la organización molecular de
la superficie celular de cada gameto, sobre las cuales existen moléculas de reconocimiento
y adhesión. La interacción del espermatozoide con el ovocito durante la fertilización ocurre
en tres niveles: i) el cúmulus oophorus, ii) la zona pelúcida, que induce la exocitosis del
contenido del acrosoma y, iii) la membrana plasmática del ovocito que concluye
fusionándose con la membrana del espermatozoide. El contacto inicial ocurre cuando los
espermatozoides se adhieren a la zona pelúcida una vez atravesados las células del cúmulus
oophorus. Los espermatozoides capacitados con acrosoma intacto son capaces de unirse a
la zona pelúcida a través de la membrana de la cabeza del espermatozoide. Figura 13. Esta
unión es prerrequisito importante para la penetración de la zona pelúcida para iniciar los
eventos que culminan en la inducción de la reacción acrosómica.
La zona pelúcida está compuesta por 3 glicoproteínas: ZP1, ZP2 y ZP3. La membrana del
espermatozoide se une a la ZP3, evento que induce la reacción acrosómica. La reacción
acrosómica expone y modifica regiones de la superficie del espermatozoide que lo hacen
capaz de interactuar con la membrana del ovocito. La reacción acrosómica permite que el
espermatozoide se adhiera fuertemente a la ZP2 a través de la cual alcanza la superficie del
ovocito (17-19).
Después del ingreso del espermatozoide al espacio perivitelino se produce la unión y fusión
de las membranas de los gametos, el paso del espermatozoide al interior del óvulo. La
unión del espermatozoide a la superficie ovocitaria ocurre en la superficie lateral de la
cabeza, siendo el punto de unión más firme en el segmento ecuatorial. Este paso requiere
movilidad espermática pero tan pronto se produce la fusión de las membranas, el
espermatozoide se detiene y posteriormente la cola es incorporada al ovocito. En la fusión
de las membranas participan varias moléculas de adhesión. La cabeza del espermatozoide
contiene una molécula denominada fertilina, la cual es considerada como la responsable de
la fusión de las membranas de los gametos. La fertilina beta es miembro de la familia
ADAM (A Disintegrin and A Metalloprotease domain) y participa en la fusión de las
21
membranas a través de la interacción de sus dominios de desintegrina con la integrina en la
superficie del ovocito(20).
FIGURA 13. Fertilización. Adaptado de Nature
La fusión del espermatozoide desencadena una serie de reacciones en el ovocito para
impedir la entrada adicional de espermatozoides y evitar la poliespermia. Inmediatamente
después de la fusión de los gametos se produce la reacción cortical, ocasionando un
endurecimiento de la zona pelúcida que la torna refractaria a la unión y penetración de
espermatozoides supernumerarios. Se previene la unión de otros espermatozoides mediante
la inactivación del receptor primario de espermatozoides, proteína ZP3, y la penetración en
la zona pelúcida se detiene mediante modificaciones en el receptor secundario de
espermatozoides, la proteína ZP2. La reacción cortical incluye la exocitosis de los gránulos
corticales y la liberación de su contenido en el espacio perivitelino compuesto por enzimas
proteolíticas que digieren los receptores de superficie. Estas reacciones se producen por un
aumento oscilatorio de los niveles de calcio intracelulares y se cree que los
espermatozoides contienen una proteína, oscilina, que desencadena la activación del
ovocito.
La fusión de los gametos induce reacciones en el ovocito que culminarán con la activación
del programa de desarrollo embrionario. La activación del ovocito requiere la participación
obligada del calcio intracelular, y puede inducirse in vitro partenogenéticamente a través de
varios estímulos que aumentan el calcio intracelular. La unión con el espermatozoide causa
una producción persistente de inositol trifosfato y un aumento en la permeabilidad del
calcio de la membrana plasmática responsable de mantener las oscilaciones internas de
calcio. La oscilina, además, se correlaciona con la habilidad del espermatozoide de disparar
las oscilación de calcio(22).
22
La activación conduce a la reanudación del ciclo celular y culminación de la segunda
división meiótica con expulsión del segundo cuerpo polar y la entrada del ovocito en
interfase, con formación del pronúcleo femenino. La formación del pronúcleo femenino se
produce unas pocas horas después de la fertilización.
La fertilización es un proceso orquestado que desencadena una serie de eventos que
resultan en la unión de los genomas paternos y maternos, y el establecimiento del potencial
mitótico del cigoto. Para iniciar el desarrollo embrionario las estructuras del
espermatozoide fertilizante se deben desamblar y transformar en componentes del cigoto
por interacción con el citoplasma del ovocito. Estas interacciones incluyen:
descondensación del núcleo del espermatozoide con formación del pronúcleo masculino,
ensamblaje del centrosoma cigótico, reunión de proteínas centrosómicas y presencia de los
microtúbulos del aster espermático alrededor del centríolo espermático. Tanto la formación
del pronúcleo masculino como el ensamblaje del centrosoma cigótico son pasos cruciales
requeridos para la aposición de los pronúcleos y la unión del genoma.
El núcleo del espermatozoide se descondensa y transforma en pronúcleo masculino. El
desarrollo de la cromatina materna y del pronúcleo masculino está regulado por factores
citoplásmicos ovocitarios comunes que regulan el ciclo celular y dependen de la madurez
del ovocito. Figura 14.
A B
FIGURA 14. Ovocito fertilizado en estadio de pronúcleos. A) Fertilización normal.
B) Fertilización triploide.
La fertilización en los humanos requiere de una estructura única, el aster espermático. Esta
estructura se forma dentro del ovocito y comprende microtúbulos dispuestos radialmente y
está organizada por la incorporación del centrosoma espermático. El centrosoma
espermático se replica durante la primera división celular para formar los dos polos del
huso mitótico requerido durante el clivaje. Ovocitos con falla de fertilización durante
tecnologías in vitro muestran configuraciones microtubulares aberrantes. La función del
centrosoma espermático refleja su potencial de fertilización (23).
23
Los pronúcleos entran en contacto en el centro del ovocito y el aster espemático crece
durante esta migración. La envoltura nuclear se desintegra posteriormente y los
cromosomas entran en contacto. La organización espacial del conjunto de microtúbulos en
la célula depende de los centros de organización, los centrosomas (24). Los centríolos en el
humano se derivan del padre y los de la madre permanecen inactivos. Eventualmente se
produce la mezcla de los cromosomas y se establece el genoma del embrión. Este proceso
se denomina singamia.
Las consecuencias del estadio de clivaje son la producción de un organismo multicelular a
partir de una célula, el cigoto, y la adquisición de grupos celulares totipotenciales
diferentes, que darán lugar a los diversos órganos del ser humano. El incremento en el
número de células ocurre sin producirse un aumento del tamaño de las mismas, ahora
denominadas blastómeras, que con las divisiones sucesivas se vuelvan cada vez mas
pequeñas. Figura 15.
El ciclo celular durante el clivaje se diferencia del ciclo celular de las células somáticas en
que no posee fase G1 ni G2 y posee una fase G0 muy corta. El acortamiento de la fase S se
realiza por la activación simultanea de varias unidades de replicación de ADN, ya que con
cada división de las blastómeras hay más ADN disponible.
FIGURA 15. Clivaje embrionario. A: Cigoto; B: estadio 2 células; C: estadio 4 células, D:
estadio 8 células, E: estadio Mórula, F: estadio blastocisto temprano; G: estadio blastocito
expandido, H: estadio blastocisto en eclosión, I: estadio blastocito exclosionado.
24
Las técnicas de reproducción asistida (TRA) nos permiten un mayor acercamiento a los
eventos de división embrionaria hasta hace apenas 2 décadas completamente hipotéticos en
la especie humana. Ahora podemos estudiar la división embrionaria en el laboratorio, lo
que nos ha permitido comprender tanto el desarrollo temprano del ser humano así como los
fenómenos que impiden que se lleve adelante correctamente. El crecimiento del embrión in
vitro es ligeramente mas lento que en condiciones in vivo, pero se pueden hacer algunas
consideraciones pertinentes que nos permitirán comprender mejor los criterios de selección
embrionaria que se aplican durante la fertilización in vitro y transferencia de embriones.
La variación en el tiempo en que los pre-embriones entran en división y se observan los
varios estadios de clivaje es grande. En términos generales, los óvulos maduros cumplen la
fertilización 5 horas después de la inseminación, comienzan la síntesis de ADN entre 9-10
horas y la fase S del ciclo celular dura 3 a 5 horas. La fase G2 dura aproximadamente 4 a 6
horas, mientras que la mitosis dura 3 a 3.5 horas. La fase G1 dura aproximadamente 6 horas
(25).
El tiempo medio entre la inseminación y el estadio de 2 células es aproximadamente 35
horas (Día 1). El tiempo medio para la segunda división (4 células) es 45 horas (Día 2). En
este día las blastómeras son claramente visibles y no deben presentarse fragmentos
citoplásmicos. La síntesis de proteínas hasta este momento utiliza las reservas de ARNm
del ovocito. El tiempo medio para la tercera división (8 células) es aproximadamente 54
horas (Día 3). Empieza a producirse la activación del genoma embrionario al utilizarse
ARNm derivado de la transcripción de su ADN. El desarrollo embrionario es más rápido
cuando se utiliza la ICSI para la inseminación (26,27).
El número de células presentes el ritmo de división de los embriones cultivados in vitro y
es un indicador importante de la capacidad de desarrollo e implantación. En días 2 y 3 de
desarrollo, los embriones con un ritmo de división normal deben haber alcanzado el estadio
de 2-4 células y 7-8 células, respectivamente.
El embrión de 8 células sufre un proceso de compactación mediante el cual uniones
estrechas aparecen entre las blastómeras, que permiten el flujo de iones e información entre
las mismas. La compactación es el primer evento de diferenciación morfogénica y celular.
Durante este fenómeno aparecen dos líneas celulares; las blastómeras que permanecen en
contacto con el exterior del embrión producirán el trofoectodermo, mientras que las células
del interior del embrión formarán la masa celular interna.
Para el final del día 4 de desarrollo se acumula líquido entre las blastómeras de la mórula y
se forma la cavidad del blastocisto o blastocele. Posteriormente, el blastocele se expande
hasta cubrir casi complemente el volumen del embrión y en este momento se denomina
blastocisto expandido. El proceso de eclosión puede apreciarse el día 5 por la tarde o
durante el día 6. En la Tabla I se puede observar un resumen del tiempo medio necesario
para el clivaje de embriones in vitro.
25
TABLA I: Tiempo de clivaje embrionario registrado post inseminación después de fertilización in vitro
No. células
Tiempo en horas (embriones
con clivaje normal y anormal)
Tiempo promedio para clivaje
(error estándar)
Estadio de clivaje
medio de 42 embriones
(error estándar)
Trounson, 1982. Edwards,1981 Trounson, 1982 Edwards, 1981
2 27-43 21-57 35.6 (±4.4) 33.2 (±1.3)
4 36-65 40-79 45.7 (±8.3) 49 (±1.3)
8 45-73 44 54.3 (±12.6) 64.8 (±1.8)
16 68-85 80.7 (±2.4)
La implantación embrionaria es un proceso dinámico que requiere una serie de
interacciones celulares especificas y cambios endometriales(30). Las fases de la
implantación incluyen: 1) Aposición, 2) Adhesión y 3) Invasión.
Aproximadamente 4 días después de la ovulación (día 18 del ciclo), el embrión entra en la
cavidad uterina en estadio de mórula compacta o blastocisto temprano y permanece en las
secreciones uterinas aproximadamente 48 a 72 horas mientras finaliza su proceso de
desarrollo hasta blastocisto expandido y logra salir de la zona pelúcida. Entre los días 4 a 5
postovulatorios (días 18-19 del ciclo) el blastocisto eclosiona de la zona pelúcida y entre los
días 5 y 7 postovulatorios empieza a interactuar con la superficie uterina.
El endometrio debe estar sincronizado con el blastocisto de modo que cuando entra en
contacto con la superficie del endometrio ésta debe estar receptiva al contacto. El período
durante el cual el blastocisto está receptivo se denomina ventana de implantación (31).
Los embriones genéticamente anormales se dividen más lentamente que los normales y, por
tanto, no estarán listos para implantarse cuando esté abierta la ventana de implantación. Por
otro lado, si el embrión normal entra a la cavidad uterina y el endometrio no está preparado
para interactuar con el embrión, éste permanece suspendido en la cavidad uterina y
eventualmente degenera.
Pueden ocurrir dos tipos de defectos endometriales que alteran el momento en que el
endometrio es receptivo. En el primer tipo de defecto, la ventana de implantación está
atrasada y, por tanto, desplazada hacia un tiempo posterior en el ciclo menstrual. En el
segundo tipo, el endometrio nunca es receptivo por lo que no existe ventana de
implantación. El endometrio puede ser no receptivo debido a una exposición inadecuada de
hormonas, pobre perfusión endometrial, condiciones inflamatorias concomitantes
(endometriosis, hidrosalpinx, endometritis) y a un deficiente estado nutricional de la mujer.
Se ha demostrado que el proceso de implantación es similar al proceso por el cual los
leucocitos se adhieren y penetran a las células endoteliales de las vénulas. Figura 16.
26
FIGURA 16. Mecanismo de implantación embrionaria. Los eventos que ocurren durante la
implantación son semejantes a los que sufre el leucocito durante su movilización hacia el
espacio extracelular.
El primer contacto entre el blastocisto y la superficie endometrial ocurre aproximadamente
en el día 19 del ciclo. Las fases de la implantación están mediadas por largas moléculas de
mucina que se extienden desde las membranas de las células endometriales dentro de la
cavidad uterina. Estas moléculas de mucina promueven la marginación y rodamiento del
blastocisto sobre la superficie endometrial. Durante el día siguiente (día 20 del ciclo), una
fibronectina especializada del trofoblasto llamada trofouteronectina o fibronectina fetal,
empieza a interactuar con la mucina endometrial. Esto induce una estrecha aposición entre
el blastocisto y el endometrio. El siguiente paso en la adhesión que está mediada por las
integrinas endometriales. Aproximadamente en el día 21 del ciclo la trofouteronectina se
une con las integrinas endometriales como la integrina á,ß3. Esta unión induce la reacción
de invasión del blastocisto completando el proceso de implantación embrionaria. Figura 17.
La adhesión mediada por integrinas es mucho más firme. La unión de las integrinas
provoca la internalización o emigración del blastocisto a través de las células endometriales
(32,33).
FIGURA 17. Blastocisto implantándose
27
Durante la invasión, delgados pliegues de trofoectodermo invaden los espacios entre las
células endometriales. En la punta de estos pliegues las integrinas anclan el trofoblasto a la
membrana basal. Esta unión desencadena la secreción de proteasas (metaloproteinasas de
matriz) que digieren la membrana basal. Algunas células del trofoectodermo se fusionan
para formar un sincicio. Este sincicio prolifera e invade la matriz extracelular endometrial.
Las células trofoectodérmicas se transforman en citotrofoblasto, migran entre el sincicio y
son seguidas por el estroma embrionario, lo cual dará lugar a la formación de la placenta.
Endometrio durante la ventana de implantación
La receptividad endometrial es un estado de diferenciación endometrial caracterizado por
un cambio en la morfología del epitelio de superficie(34,35). Figura 18. Las células
endometriales muestran en su superficie microvellosidades que durante la ventana de
implantación se fusionan para formar una estructura única llamada pinópodo(36). Los
estudios secuenciales con microscopía de barrido de muestras de endometrio han
demostrado que los pinópodos se forman durante un período de uno a dos días únicamente
y se relacionan con la implantación. Para el día 22 del ciclo los pinópodos prácticamente
han desaparecido y las microvellosidades son más prominentes. Para el día 23 las
microvellosidades siguen proliferando y cubren casi toda la superficie endometrial y para el
día 24 la superficie endometrial aparece con forma de domo y cubierta por
microvellosidades pequeñas y gruesas (37).
FIGURA 18. Formación de pinópodos durante la fase de receptividad endometrial. A) Día
LH + 4, B) Día LH + 7. Adaptado de Nikas 2002 (34)
En promedio, la formación de pinópodos es más temprana en ciclos estimulados (días 19-
20) y más tardía en ciclos sustituidos (días 21-22) comparado con ciclos naturales (días 20-
21). Sin embargo, hay una gran variación en el momento que aparecen durante el ciclo
menstrual. Los pinópodos son progesterona-dependientes y se detectan sólo al momento de
la adherencia del blastocisto(38).
El papel que juegan los pinópodos en el proceso de implantación se ha cuestionado en los
últimos años(39,40). Estudios de microscopía electrónica han demostrado que el blastocisto
28
no se adhiere a la superficie de los pinópodos. Se ha sugerido que los pinópodos absorben
secreciones de la superficie endometrial y favorecen la aposición del blastocisto sin
representar un punto de anclaje para la implantación; sin embargo, no se ha podido
comprobar la naturaleza picnótica de los pinópodos humanos, a diferencia de los de otras
especies, por lo que la función de estas estructuras es desconocida y sólo sirven como un
marcador de la receptividad endometrial(41).
El inicio de la receptividad endometrial es dependiente de la regulación a la baja de los
recetores epiteliales de progesterona y estradiol, inducida por la progesterona. Cuando el
embrión entra en la cavidad uterina se produce una secuencia de eventos preprogramados
que incluyen la producción y secreción por parte del endometrio y del embrión de una
multitud de factores bioquímicos como citocinas, factores de crecimiento y moléculas de
adhesión que vuelven al endometrio receptivo al blastocisto.
Estos factores incluyen glicodelina, citocinas como el factor inhibidor de leucemia, la
interleucina 1, el factor estimulante de colonias, integrinas como la ávã3, prostaglandinas y
la MUC1, y proveen la base para la comunicación entre el endometrio y el embrión bajo la
influencia de los esteroides sexuales. La expresión y/o secreción de estas sustancias dentro
de la cavidad uterina se pueden utilizar como marcadores de receptividad endometrial (42,43).
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Glossário revisado da Terminologia das Técnicas de Reprodução Assistida (TRA), 2009. Comintê Internacional para Monitorização da Tecnologia Reprodutoiva Assistida (ICMART) e Organização Mundial de Saúde (OMS)